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大鼠肺大動脈內(nèi)皮細胞使用方法

發(fā)表時間:2025-07-30
大鼠肺大動脈內(nèi)皮細胞使用方法:

在技術(shù)部標準操作流程下,小鼠棕色脂肪細胞不建議傳代;建議您收到細胞后盡快進行相關(guān)實驗。

客戶收到細胞后,請按照以下方法進行操作。

1、取出25cm2培養(yǎng)瓶,75%酒精消毒,拆下封口膜,放入37℃,5%CO2細胞培養(yǎng)箱中靜置3-4h,以穩(wěn)定細胞狀態(tài);

2、待細胞達到80%匯合時準備進行傳代培養(yǎng);

3、細胞傳代

1) 吸出25cm2培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基,用PBS清洗細胞一次;

2) 添加0.25%胰蛋白酶消化液約1ml至培養(yǎng)瓶中,37℃溫浴3min左右;倒置顯微鏡下觀察,待細胞回縮變圓后吸棄消化液,再加入完全培養(yǎng)液終止消化;

3) 用吸管輕輕吹打混勻,按1:2適當(dāng)?shù)谋壤M行接種傳代,然后補充新鮮的完全培養(yǎng)基至5ml,放入37℃,5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng);

4)待細胞完全貼壁后,培養(yǎng)觀察。之后每隔2-3天更換新鮮的完全培養(yǎng)基。**續(xù)寫內(nèi)容:**

4、注意事項
1)細胞傳代時需嚴格控制消化時間,避免過度消化導(dǎo)致細胞損傷。若消化不完全,可適當(dāng)延長消化時間,但需密切觀察細胞形態(tài)變化。
2)吹打細胞時動作應(yīng)輕柔,避免產(chǎn)生過多氣泡,以免影響細胞存活率。
3)傳代比例可根據(jù)實驗需求調(diào)整,但建議不超過1:3,以確保細胞生長狀態(tài)穩(wěn)定。

5、凍存與復(fù)蘇(若需長期保存)
1)待細胞生長至對數(shù)生長期時,消化收集細胞,離心后加入適量凍存液(含10%DMSO的完全培養(yǎng)基),分裝至凍存管中。
2)采用程序降溫法(如4℃ 30min,-20℃ 1h,-80℃過夜)后轉(zhuǎn)入液氮長期保存。
3)復(fù)蘇時,迅速將凍存管置于37℃水浴中融化,離心去除凍存液后,用完全培養(yǎng)基重懸細胞并接種至培養(yǎng)瓶。

6、實驗建議
1)若細胞狀態(tài)不佳(如貼壁率低、生長緩慢),可適當(dāng)增加血清濃度(不超過20%)或更換新鮮培養(yǎng)基。
2)定期檢測細胞是否污染(如培養(yǎng)基渾濁、pH異常),若有污染跡象,應(yīng)立即終止培養(yǎng)并徹底消毒操作環(huán)境。

7、常見問題解答
Q:細胞傳代后為何遲遲不貼壁?
A:可能因消化過度或吹打力度過大導(dǎo)致細胞損傷,建議優(yōu)化消化時間并輕柔操作。
Q:培養(yǎng)基頻繁變黃是否正常?
A:若細胞密度較高,代謝旺盛會導(dǎo)致培養(yǎng)基酸化,需及時更換;若細胞量少仍頻繁變黃,需排查污染可能。
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